Philippe DELAVAULT

Professeur de Biologie Cellulaire et Biotechnologies Végétales. Enseignements en Licence et Master : Biologie Cellulaire (L1), Phytopathologie (L3, M1 et M2) et Biotechnologies Végétales (L3)

Étude des plantes parasites des genres Orobanche et Phelipanche et des interactions avec leurs plantes hôtes par des approches génomiques et transcriptomiques : - Induction de la germination par les stimulants - Mise en place de l'haustorium - Amélioration génétique de la résistance des plantes hôtes - Réponse moléculaire de la plante hôte infestée par la plante parasite - Diversité génétique et génome plastidial

Titres et diplômes
 

• Depuis 2005 Professeur des Universités, UFR Sciences et Techniques, Nantes.
• 2000 Habilitation à Diriger des Recherches soutenue le 24 février 2000 : « Aspects moléculaires des particularités génomiques et physiologiques des végétaux supérieurs parasites ».
• 1991 - 1995 Doctorat au GPPV, UFR Sciences et Techniques de Nantes, sous la direction de P. Thalouarn : « Evolution du génome plastidial et de son expression chez les végétaux supérieurs parasites »

Expérience professionnelle 

• 2007 Congé pour recherches dans le laboratoire du professeur B. Kunkel, Washington University, Saint Louis, Missouri, USA : « Etude des caractères infectieux de deux organismes pathogènes de plantes : la bactérie P. syringae et la plante parasite P. ramosa ».
• 1995 - 1996 Post-Doctorat dans le laboratoire du professeur J. Yoder, Department of Vegetable Crops, University of California, Davis, USA : « Identification de gènes responsables du parasitisme végétal ».

Recherche

• Thématique : « Etude des plantes parasites des genres Phelipanche et Orobanche et des interactions avec leurs plantes hôtes ».
• Production scientifique : 65 publications dans des revues à comité de lecture - 69 communications dans des conférences, congrès et colloques.
• Direction de 14 thèses de doctorat dont 2 en co-direction avec l'INRA et l'Ifremer de Nantes - Encadrement de 17 étudiants en Master 2 Recherche.
• Porteur du Projet ANR PRCE (2017-2019) miPEPiTO
• Responsable scientifique pour Nantes Université du Projet ANR PRCE (2022-2025) STIGO

Fonctions administratives

• Responsable de l'équipe Rhizoplante de l'Unité en Sciences Biologiques et Biotechnologies US2B
• Directeur du Département de Biologie

Sélection de quelques publications significatives de l'activité de recherche
 

• Tourneur S., Combier JP., Plaza S., Muños S., Delavault P., 2024. miPEPs inhibit seed germination of the root parasitic plant Orobanche cumana. Plants, People, Planet, 1-12, doi.org /10.1002/ppp3.10501.
• Becker C., Berthomé R., Delavault P., Flutre T., Fréville H., Gibot-Leclerc S., Le Corre V., Morel J-B., Moutier N., Muños S., et al., 2023. The ecologically relevant genetics of plant–plant interactions. Trends in Plant Science, doi.org/10.1016/j.tplants.2022.08.014.
• Martinez L., Pouvreau JB., Montiel G., Jestin C., Delavault P., Simier P., Poulin L., 2023. Soil microbiota promotes early developmental stages of Phelipanche ramosa L. Pomel during plant parasitism on Brassica napus L.  Plant and Soil,  doi.org/10.1007/s11104-022-05822-6
• Chabaud M., Auriac M-C., Boniface M-C., Delgrange S., Folletti T., Jardinaud M-F., Legendre A., Pérez-Vich B., Pouvreau J-B., Velasco L., Delavault P., Muños S., 2022. Wild Helianthus species: A reservoir of resistance genes for sustainable pyramidal resistance to broomrape in sunflower. Frontiers in Plant Science, doi.org/10.3389/fpls.2022.1038684.
• Lopez-Obando M., Guillory A., Boyer FD., Cornu D., Hoffmann B., Le Bris P., Pouvreau JB., Delavault P., Rameau C., de Saint Germain A., Bonhomme S., 2021. The Physcomitrium (Physcomitrella) patens PpKAI2L receptors for strigolactones and related compounds function via MAX2-dependent and independent pathways. Plant Cell, doi.org/10.1093/plcell/koab217
• de Saint Germain A., Jacobs A., Brun G., Pouvreau JB., Braem L., Cornu D., Clavé G., Baudu E., Steinmetz V., Servajean V., Wicke S., Gevaert K., Simier P., Goormachtig S., Delavault P. and Boyer FD., 2021. A Phelipanche ramosa KAI2 protein perceives enzymatically strigolactones and isothiocyanates. Plant Communications, doi.org/10.1016/j.xplc.2021.100166
• Brun G., Spallek T., Simier P., Delavault P., 2021.  Molecular Actors of Seed Germination and Haustoriogenesis in Parasitic Weeds. Plant Physiology, doi.org/10.1093/plphys/kiaa041.
• Fernández-Aparicio M., Delavault P., Timko M., 2020. Management of Infection by Parasitic Weeds: A Review. Plants 9:1184, doi/10.3390/plants9091184
• Delavault P., 2020. Are root parasitic plants like any other plant pathogens? New Phytologist 226:641–643, doi.org/10.1111/nph.16504.
• Huet S. et al., 2020. Populations of Phelipanche ramosa influence their seed microbiota. Frontiers in Plant Science doi.org/10.3389/fpls.2020.01075.
• Brun G. et al., 2019. CYP707As are effectors of karrikin and strigolactone signaling pathways in Arabidopsis thaliana and parasitic plants. Plant Cell Environ 42:2612-2626.
• Brun G. et al., 2018. Seed germination in parasitic plants: what insights can we expect from strigolactone research? J Exp Bot 69:2265-2280.
• Delavault P. et al., 2017. Communication Between Host Plants and Parasitic Plants. Advances in Botanical Research, How Plants Communicate with their Biotic Environment 82:55-82.
• Goyet V. et al., 2017. Haustorium initiation in the obligate parasitic plant Phelipanche ramosa involves a host-exudated cytokinin signal. J Exp Bot 68: 5539–5552.
• Delavault P., 2015. Knowing the parasite: Biology and genetics of Orobanche. Helia 38:15-29.
• Lechat M-M. et al., 2015. Seed response to strigolactone is controlled by ABA-independent DNA methylation in the obligate root parasitic plant, Phelipanche ramosa L. Pomel. J Exp Bot 66:3129-3140.
• Péron T. et al., 2012. Role of the sucrose synthase encoding PrSus1 gene in the development of the parasitic plant Phelipanche ramosa L. (Pomel). Mol Plant Microbe Int 25:402-411.
• Lechat MM. et al., 2012. PrCYP707A1, an ABA catabolic gene, is a key component of Phelipanche ramosa seed germination in response to the strigolactone analogue GR24. J Exp Bot 63:5311-5322.
• Auger B. et al., 2012. Germination Stimulants of Phelipanche ramosa in the Rhizosphere of Brassica napus Are Derived from the Glucosinolate Pathway. Mol Plant Microbe Int 7:993-1004.
• Gauthier M. et al., 2012. Characterization of resistance to branched broomrape, Phelipanche ramosa, in winter oilseed rape. Crop Prot 42:56-63.
• Dongo A. et al., 2011. Development of a high-throughput real-time quantitative PCR method to detect and quantify contaminating seeds of Phelipanche ramosa and Orobanche cumana in crop seed lots. Weed Res 52:34-41.
• Pérez-de-Luque A. et al., 2009. Understanding Orobanche and Phelipanche–host plant interactions and developing resistance. Weed Res 49:8-22.
• de Zelicourt A. et al., 2007. Ha-DEF1, a sunflower defensine, induces cell death in Orobanche parasitic plant. Planta 226:591-600
• Letousey P. et al., 2007. Molecular analysis of sunflower resistance mechanisms to Orobanche cumana. Plant Pathol 56:536-546
• Vieira Dos Santos C. et al., 2003. Defence gene expression analysis of Arabidopsis thaliana parasitized by Orobanche ramosa. Phytopathology 93:451-457
• Delavault P. et al., 2002. Isolation of mannose 6-phosphate reductase cDNA, changes in enzyme activity and mannitol content in broomrape (Orobanche ramosa) parasitic on tomato roots. Physiol Plantarum 115:48-55
• Delavault P. et al., 1995. Divergent evolution of two plastid genes, rbcL and atpB, in a non-photosynthetic parasitic plant. Plant Mol Biol 29:1071-1079